Intestine Absorption (Franz Cell, Porcine Intestine, Krebs-Ringer, 1 Time Point)

  • Product Code: 125440

บริการวิเคราะห์การซึมผ่านของลำไส้ด้วย Franz Cell โดยใช้ลำไส้เล็กของสุกรพร้อมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer HEPES

฿3,950.00
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -
  • -

การทดสอบดูดซึมของลำไส้ Intestine Absorption (Franz Cell, Porcine Intestine, Krebs-Ringer, 1 Time Point)

วัสดุที่ต้องการ:

  • เซลล์การแพร่กระจายของฟรานซ์
  • ลำไส้หมู (สดหรือเก็บไว้อย่างเหมาะสม)
  • บัฟเฟอร์ Krebs-Ringer (บัฟเฟอร์ HEPES หรือโซเดียมไบคาร์บอเนต ขึ้นอยู่กับการตั้งค่า)
  • ช่องผู้บริจาคและตัวรับสำหรับเซลล์ฟรานซ์
  • เครื่องกวนแม่เหล็ก
  • เข็มฉีดยาและเข็ม
  • เครื่องวัดพีเอช
  • ตู้ฟักหรืออ่างน้ำ (หากจำเป็นเพื่อรักษาอุณหภูมิ)
  • เครื่องมือวิเคราะห์ (เช่น HPLC, สเปกโตรโฟโตมิเตอร์) สำหรับการวิเคราะห์ตัวอย่าง
  • สารประกอบการดูดซึม (สารทดสอบ)

การตระเตรียม:

  1. เตรียมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer :

    • สำหรับบัฟเฟอร์ HEPES: ละลาย NaCl, KCl, CaCl₂, MgSO₄, NaH₂PO₄, กลูโคส และ HEPES ในปริมาณที่เหมาะสมในน้ำกลั่น ปรับ pH เป็น 7.4
    • สำหรับบัฟเฟอร์โซเดียมไบคาร์บอเนต: เตรียมในลักษณะเดียวกันแต่ใช้ NaHCO₃ แทน HEPES และปรับ pH ด้วยสภาพแวดล้อม CO₂ หากจำเป็น
  2. เตรียมลำไส้หมู :

    • รับลำไส้หมูสดจากแหล่งที่เหมาะสม
    • ทำความสะอาดลำไส้เพื่อขจัดเนื้อหาและเศษเยื่อเมือก
    • ตัดลำไส้ออกเป็นส่วนที่เหมาะสมสำหรับติดบนเซลล์ฟรานซ์
  3. ติดเนื้อเยื่อลำไส้ :

    • ติดตั้งส่วนของลำไส้อย่างระมัดระวังระหว่างช่องผู้บริจาคและตัวรับของเซลล์ฟรานซ์ ตรวจสอบให้แน่ใจว่าไม่มีการรั่วไหลและเนื้อเยื่ออยู่ในตำแหน่งที่ปลอดภัย

การตั้งค่าการทดสอบ:

  1. เติมช่องรับน้ำ :

    • เติมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer ในช่องตัวรับ เพื่อให้แน่ใจว่าส่วนผสมเข้ากันดีและมีอากาศถ่ายเท ช่องนี้จะเลียนแบบฝั่งเลือดของลำไส้
    • วางแท่งแม่เหล็กในช่องตัวรับเพื่อการผสมอย่างต่อเนื่อง
  2. เพิ่มสารประกอบทดสอบลงในช่องผู้บริจาค :

    • ใส่สารประกอบทดสอบ (สารที่คุณต้องการศึกษาเพื่อการดูดซึม) ไปที่ช่องผู้บริจาค ช่องนี้แสดงถึงด้านลูเมนของลำไส้
    • สารประกอบควรอยู่ในตัวทำละลายหรือพาหะที่เหมาะสมซึ่งไม่ทำลายเนื้อเยื่อ
  3. รักษาเงื่อนไขการทดลอง :

    • วางเซลล์ฟรานซ์ไว้ในตู้ฟักหรืออ่างน้ำเพื่อรักษาอุณหภูมิทางสรีรวิทยา (ปกติจะอยู่ที่ประมาณ 37°C)
    • ตรวจสอบให้แน่ใจว่ามีการคนอย่างต่อเนื่องในช่องตัวรับเพื่อจำลองการไหลเวียนของเลือดและเพื่อป้องกันการก่อตัวของชั้นขอบเขต

การสุ่มตัวอย่าง:

  1. การเก็บตัวอย่าง :

    • ตามช่วงเวลาที่กำหนดไว้ล่วงหน้า (เช่น ทุกๆ 30 นาทีหรือทุกชั่วโมง) ให้ถอนของเหลวจำนวนเล็กน้อยออกจากช่องรับยาโดยใช้หลอดฉีดยา
    • เปลี่ยนปริมาตรที่ถอนออกด้วยบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer ใหม่เพื่อรักษาปริมาตรให้คงที่
  2. วิเคราะห์ตัวอย่าง :

    • วิเคราะห์ตัวอย่างที่เก็บมาโดยใช้เทคนิคการวิเคราะห์ที่เหมาะสม (เช่น HPLC, UV-spectrophotometry) เพื่อกำหนดความเข้มข้นของสารประกอบทดสอบ
    • พล็อตความเข้มข้นของสารประกอบทดสอบในช่องของตัวรับเมื่อเวลาผ่านไปเพื่อประเมินอัตราการดูดซึม



Be the first to review this product :-)

Please login to write a review.






Recommend Lab-Service
Lab Service ราคา
Intestine Absorption (Franz Cell, Porcine Intestine, Krebs-Ringer, 1 Time Point)

บริการวิเคราะห์การซึมผ่านของลำไส้ด้วย Franz Cell โดยใช้ลำไส้เล็กของสุกรพร้อมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer HEPES

การทดสอบดูดซึมของลำไส้ Intestine Absorption (Franz Cell, Porcine Intestine, Krebs-Ringer, 1 Time Point)

วัสดุที่ต้องการ:

  • เซลล์การแพร่กระจายของฟรานซ์
  • ลำไส้หมู (สดหรือเก็บไว้อย่างเหมาะสม)
  • บัฟเฟอร์ Krebs-Ringer (บัฟเฟอร์ HEPES หรือโซเดียมไบคาร์บอเนต ขึ้นอยู่กับการตั้งค่า)
  • ช่องผู้บริจาคและตัวรับสำหรับเซลล์ฟรานซ์
  • เครื่องกวนแม่เหล็ก
  • เข็มฉีดยาและเข็ม
  • เครื่องวัดพีเอช
  • ตู้ฟักหรืออ่างน้ำ (หากจำเป็นเพื่อรักษาอุณหภูมิ)
  • เครื่องมือวิเคราะห์ (เช่น HPLC, สเปกโตรโฟโตมิเตอร์) สำหรับการวิเคราะห์ตัวอย่าง
  • สารประกอบการดูดซึม (สารทดสอบ)

การตระเตรียม:

  1. เตรียมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer :

    • สำหรับบัฟเฟอร์ HEPES: ละลาย NaCl, KCl, CaCl₂, MgSO₄, NaH₂PO₄, กลูโคส และ HEPES ในปริมาณที่เหมาะสมในน้ำกลั่น ปรับ pH เป็น 7.4
    • สำหรับบัฟเฟอร์โซเดียมไบคาร์บอเนต: เตรียมในลักษณะเดียวกันแต่ใช้ NaHCO₃ แทน HEPES และปรับ pH ด้วยสภาพแวดล้อม CO₂ หากจำเป็น
  2. เตรียมลำไส้หมู :

    • รับลำไส้หมูสดจากแหล่งที่เหมาะสม
    • ทำความสะอาดลำไส้เพื่อขจัดเนื้อหาและเศษเยื่อเมือก
    • ตัดลำไส้ออกเป็นส่วนที่เหมาะสมสำหรับติดบนเซลล์ฟรานซ์
  3. ติดเนื้อเยื่อลำไส้ :

    • ติดตั้งส่วนของลำไส้อย่างระมัดระวังระหว่างช่องผู้บริจาคและตัวรับของเซลล์ฟรานซ์ ตรวจสอบให้แน่ใจว่าไม่มีการรั่วไหลและเนื้อเยื่ออยู่ในตำแหน่งที่ปลอดภัย

การตั้งค่าการทดสอบ:

  1. เติมช่องรับน้ำ :

    • เติมบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer ในช่องตัวรับ เพื่อให้แน่ใจว่าส่วนผสมเข้ากันดีและมีอากาศถ่ายเท ช่องนี้จะเลียนแบบฝั่งเลือดของลำไส้
    • วางแท่งแม่เหล็กในช่องตัวรับเพื่อการผสมอย่างต่อเนื่อง
  2. เพิ่มสารประกอบทดสอบลงในช่องผู้บริจาค :

    • ใส่สารประกอบทดสอบ (สารที่คุณต้องการศึกษาเพื่อการดูดซึม) ไปที่ช่องผู้บริจาค ช่องนี้แสดงถึงด้านลูเมนของลำไส้
    • สารประกอบควรอยู่ในตัวทำละลายหรือพาหะที่เหมาะสมซึ่งไม่ทำลายเนื้อเยื่อ
  3. รักษาเงื่อนไขการทดลอง :

    • วางเซลล์ฟรานซ์ไว้ในตู้ฟักหรืออ่างน้ำเพื่อรักษาอุณหภูมิทางสรีรวิทยา (ปกติจะอยู่ที่ประมาณ 37°C)
    • ตรวจสอบให้แน่ใจว่ามีการคนอย่างต่อเนื่องในช่องตัวรับเพื่อจำลองการไหลเวียนของเลือดและเพื่อป้องกันการก่อตัวของชั้นขอบเขต

การสุ่มตัวอย่าง:

  1. การเก็บตัวอย่าง :

    • ตามช่วงเวลาที่กำหนดไว้ล่วงหน้า (เช่น ทุกๆ 30 นาทีหรือทุกชั่วโมง) ให้ถอนของเหลวจำนวนเล็กน้อยออกจากช่องรับยาโดยใช้หลอดฉีดยา
    • เปลี่ยนปริมาตรที่ถอนออกด้วยบัฟเฟอร์ Krebs-Ringer ใหม่เพื่อรักษาปริมาตรให้คงที่
  2. วิเคราะห์ตัวอย่าง :

    • วิเคราะห์ตัวอย่างที่เก็บมาโดยใช้เทคนิคการวิเคราะห์ที่เหมาะสม (เช่น HPLC, UV-spectrophotometry) เพื่อกำหนดความเข้มข้นของสารประกอบทดสอบ
    • พล็อตความเข้มข้นของสารประกอบทดสอบในช่องของตัวรับเมื่อเวลาผ่านไปเพื่อประเมินอัตราการดูดซึม
Mechanism -
Appearance -
Longevity -
Strength -
Storage -
Shelf Life -
Allergen(s) -
Dosage (Range) -
Dosage (Per Day) -
Mix Method -
Heat Resistance -
Stable in pH range -
Solubility -
Product Types -
INCI -

ตะกร้า

ไม่มีสินค้า

Subtotal: ฿0.00
฿0.00 รวมทั้งสิ้น :